Protozoologické praktikum - MB160C30

• Anglický název: Laboratory course of protozoology
• Zajišťuje: Katedra parazitologie (31-161)
• Fakulta: Přírodovědecká fakulta
• Platnost: od 2014 do 2015
• Semestr: letní
• E-Kredity: 5
• Způsob provedení zkoušky: letní s.:
• Rozsah, examinace: letní s.:0/5, Z [HT]
• Počet míst: 12
• Minimální obsazenost: neomezen
• 4EU+: ne
• Virtuální mobilita / počet míst pro virtuální mobilitu: ne
• Stav předmětu: vyučován
• Jazyk výuky: čeština
• Poznámka: povolen pro zápis po webu
• Garant: prof. RNDr. Jan Tachezy, Ph.D.; doc. Mgr. Vladimír Hampl, Ph.D.
• Vyučující: doc. Mgr. Vladimír Hampl, Ph.D.; RNDr. Petr Rada, Ph.D.; prof. RNDr. Jan Tachezy, Ph.D.
• Třída: SEM s vysokým rozlišením
• Korekvizity : MB160P37

Anotace

čeština

Poslední úprava: doc. Mgr. Vladimír Hampl, Ph.D. (17.02.2020)

Pokročilý laboratorní kurz zaměřený na morfologii, ultrastrukturu a determinaci parazitických prvoků a na speciální techniky používané při výzkumu a diagnostice protozoárních infekcí .

angličtina

Poslední úprava: PARAZIT (10.05.2002)

This advanced laboratory course is aimed at study of cell organization of the main groups of parasitic protozoa, determination of protozoan parasites and training in special laboratory techniques used in protozoology research and in diagnosis of infections caused by parasitic protozoa. The course includes practical microscopy, interpretation of electronmicrographs, and training in isolation, preparation and in vitro cultivation of parasitic protozoa.

Adam K.M.G., Paul J. and Zaman V. Medical and Veterinary Protozoology an Illustrated Guide. Churchill Livingstone, Edinburgh and London 1971.
Ash L. R. and Orihel T.C. Atlas of Human Parasitology, 3rd edition, ASCP Press, Chicago 1990.
Taylor A.E.R. and Baker J.R. In vitro Methods for Parasite Cultivation. Academic Press, London, 1987.
Updated methodology sheets, schemes and photographs will be provided at the classes

Literatura

Poslední úprava: doc. Mgr. Vladimír Hampl, Ph.D. (17.02.2020)

Odborná literatura:

Aktuální sylaby, schemata a metodické návody průběžně poskytované během kurzu.

Požadavky ke zkoušce

Poslední úprava: prof. RNDr. Jaroslav Kulda, CSc. (10.01.2012)

Požadavkem zápočtu je účast na praktiku, úspěšné složení závěrečné poznávací zkoušky (mikroskopické preparáty, interpretace fotografií z elektronového mikroskopu)a znalost principu metod prováděných na praktiku.

Sylabus

čeština

Poslední úprava: doc. Mgr. Vladimír Hampl, Ph.D. (20.02.2019)

17. 2.   Úvod, Kinetoplastea I. Návštěva pracoviště elektronové mikroskopie, práce s TEM. Základní ultrastruktura kinetoplastid, charakteristiky hlavních skupin. "Bodonina": kultivace, odběr a barvení materiálu z kultur a z infikovaných hostitelů.

24. 2.   Kinetoplastea II. Jednohostitelská kinetoplastida. Morfologické formy ve vývojových cyklech trypanosomatid. Demonstrace nativů. Pitva infikovaných hostitelů. Barvení dle Wallace a DAPI.

2. 3.     Kinetoplastea III. Patogenní trypanosomy a leishmanie, vektorová a obratlovčí stádia, mikroskopická determinace hlavních zástupců. Izolace krevních forem trypanosom ionexovou chromatografií. Koncentrace trypanosom ve vzorku krve hematokritovou centrifugací.

9. 3.     Diplomonadida a Retortamonadida. Ultrastruktura, demonstrace hlavních zástupů. Giardia - diagnostika, kultivace in vitro, příprava preparátů v anaerobních komůrkách.

16. 3.   Praeaxostyla a Parabasalia. Ultrastruktura, demonstrace kultur, pitvy infikovaných hostitelů. Příprava a fixace preparátů za vlhka.

23. 3.   Patogenní trichomonády. Demonstrace patogenních trichomonád člověka a zvířat. Morfologické rozlišení patogenních a nepatogenních trichomonád člověka. Použití "InPouch" systému pro kultivační diagnostika patogenních trichomonád. Mikrobní obrazy poševní.

30. 3.   Patogenní amphizoické améby. Naegleria, Acanthamoeba, Balamuthia.     Ultrastruktura,mikroskopické rozlišení. Kultivace akantabéb a naeglerií, flagelární test, barvení trichromem.

6. 4.     Střevní améby člověka. Entamoeba histolytica. Kultivace. Laboratorní diagnostika. Příprava a barvení preparátů hematoxylinem. Mikroskopické rozlišení střevních améb člověka.

13. 4.   Gregariny a Cryptosporidium. Základní ultrastruktura apicomplex a zvláštnosti gregarin a cryptosporidií. Pitva hostitelů infikovaných gregarinami. Detekce oocyst cryptosporidií v nativních preparátech a diagnostické barvení.

20. 4.   Kokcidie: Eimeria, Toxoplasma, Sarcocystis, Frenkelia. Vývojové cykly a ultrastruktura. Určování vývojových stádií kokcidií v histologických preparátech. Demonstrace oocyst.

27. 4.   Haemosporida a Piroplasmida.  Ultrastruktura a vývojové cykly. Haemosporina ptáků (Haemoproteus. Plasmodium, Leukocytozoon). Identifikace theilerií a babesií na krevních roztětech a tkáňových otiscích. Původci malárie a jejich mikroskopická diagnostika. Stanovení parazitémie.

11. 5.   Microspora. Ultrastruktura a vývojové cykly základních rodů. Diagnostika a příprava preparátů vybraných druhů z infikovaného hmyzu a korýšů. Demonstrace trvalých preparátů mikrosporidií ryb, savců a člověka. Oportunní mikrosporidiózy člověka a jejich diagnostika. (Dr. M. Hyliš).

angličtina

Poslední úprava: doc. Mgr. Vladimír Hampl, Ph.D. (17.02.2020)

This advanced laboratory course is aimed at study of cell organization of the main groups of parasitic protozoa, determination of protozoan parasites and training in special laboratory techniques used in protozoology research and in diagnosis of infections caused by parasitic protozoa. The course includes practical microscopy, interpretation of electronmicrographs, and training in isolation, preparation and in vitro cultivation of parasitic protozoa

References