Faktory ovlivňující dlouhodobé přežití kryoprezervovaných allograftů v RVOT

• Název práce v češtině: Faktory ovlivňující dlouhodobé přežití kryoprezervovaných allograftů v RVOT
• Název v anglickém jazyce: Factors influencing the long-term survival of the cryopreserved allografts in RVOT
• Klíčová slova: RVOT, Allograft, Xenograft, Reoperace, Selhání konduitu, Antigen-prezentující buňky, Kryoprezervace, Degenerace, Histopatologie.
• Klíčová slova anglicky: Right ventricular outflow tract, Allograft, Xenograft, Reoperation, Conduit failure, Antigen Presenting Cells, Cryopreservation, Degeneration, Heart Valve, Histopathology.
• Akademický rok vypsání: 2017/2018
• Typ práce: disertační práce
• Jazyk práce: čeština
• Ústav: Klinika kardiovaskulární chirurgie (13-343)
• Vedoucí / školitel: doc. MUDr. Vilém Rohn, CSc.
• Řešitel: skrytý - zadáno a potvrzeno stud. odd.
• Datum přihlášení: 07.10.2017
• Datum zadání: 07.10.2017
• Datum potvrzení stud. oddělením: 07.10.2017
• Datum odevzdání elektronické podoby: 26.05.2024

Seznam odborné literatury

1. Brown JW, Ruzmetov M, Vijay P, Rodefeld MD, Turrentine MW. Right ventricular outflow tract reconstruction with a polytetrafluoroethylene monocusp valve: a twelve-year experience. J Thorac Cardiovasc Surg. May 2007;133(5):1336-43. doi:10.1016/j.jtcvs.2006.12.045
2. Cc pMJD. Mechanické srdeční chlopně versus bioprotézy. Interní Med.; 2006.
3. Warrell DA, Cox TM, Firth JD, Dwight J. Oxford textbook of medicine : cardiovascular disorders : selected and updated chapters from the Oxford textbook of medicine, fifth edition. 5th ed. Oxford University Press; 2016:xvii, 668 p. : ill. (b&w, and col.).
4. Fiala R. Mechanické a morfologické vlastnosti lidských chlopenních štěpů v závislosti na délce kryoprezervace. Mechanické a morfologické vlastnosti lidských chlopenních štěpů v závislosti na délce kryoprezervace /. 2019;
5. van de Woestijne PC, Mokhles MM, de Jong PL, Witsenburg M, Takkenberg JJ, Bogers AJ. Right ventricular outflow tract reconstruction with an allograft conduit in patients after tetralogy of Fallot correction: long-term follow-up. Ann Thorac Surg. Jul 2011;92(1):161-6. doi:10.1016/j.athoracsur.2011.02.036
6. Čihák R. Anatomie. Anatomie /. 2016;
7. Muresian H. The clinical anatomy of the right ventricle. Clin Anat. Apr 2016;29(3):380-98. doi:10.1002/ca.22484
8. Jan D, Pavel Ž. Chirurgie srdečních chlopní: (...nejen pro kardiochirurgy) ve 200 vyobrazeních. Grada Publishing a.s.; 2009.
9. Bashey RI, Torii S, Angrist A. Age-related collagen and elastin content of human heart valves. J Gerontol. Apr 1967;22(2):203-8. doi:10.1093/geronj/22.2.203
10. Mohammadi H, Mequanint K. Prosthetic aortic heart valves: modeling and design. Med Eng Phys. Mar 2011;33(2):131-47. doi:10.1016/j.medengphy.2010.09.017
11. Anderson RD, Kumar S, Parameswaran R, et al. Differentiating Right- and Left-Sided Outflow Tract Ventricular Arrhythmias: Classical ECG Signatures and Prediction Algorithms. Circ Arrhythm Electrophysiol. Jun 2019;12(6):e007392. doi:10.1161/CIRCEP.119.007392
12. Zipes DP, Jalife J, Stevenson WG. Cardiac electrophysiology : from cell to bedside. Seventh edition. ed. Elsevier; 2018:xxxi, 1389 pages.
13. Hai JJ, Lachman N, Syed FF, Desimone CV, Asirvatham SJ. The anatomic basis for ventricular arrhythmia in the normal heart: what the student of anatomy needs to know. Clin Anat. Sep 2014;27(6):885-93. doi:10.1002/ca.22362
14. Hamlet H. Anatomical and Physiological Patterns of Right Ventricle. Journal of Cardiology & Current Research2015.
15. Rubáčková Popelová J. Vrozené srdeční vady v dospělosti. 2., zcela přepracované a doplněné vydání ed. Grada Publishing; 2018.
16. Hučín B, Žáček P. Dětská kardiochirurgie 2., doplněné vydání. 1. elektronické vydání ed. Grada; 2012.
17. Popelová J. Vrozené srdeční vady v dospělosti. Vyd. 1. ed. Avicenum. Grada; 2003:333 p.
18. Gerosa G, McKay R, Ross DN. Replacement of the aortic valve or root with a pulmonary autograft in children. Ann Thorac Surg. Mar 1991;51(3):424-9. doi:10.1016/0003-4975(91)90858-n
19. Vojáček J, El-Hamamsy I, Ondrášek J, et al. Current status of the Ross procedure in aortic valve surgery. journal article. Cor et Vasa. 2017;59(1):e71-e76.
20. Brown JW, Ruzmetov M, Rodefeld MD, Vijay P, Turrentine MW. Right ventricular outflow tract reconstruction with an allograft conduit in non-ross patients: risk factors for allograft dysfunction and failure. Ann Thorac Surg. Aug 2005;80(2):655-63; discussion 663-4. doi:10.1016/j.athoracsur.2005.02.053
21. Selamet Tierney ES, Gersony WM, Altmann K, et al. Pulmonary position cryopreserved homografts: durability in pediatric Ross and non-Ross patients. J Thorac Cardiovasc Surg. Aug 2005;130(2):282-6. doi:10.1016/j.jtcvs.2005.04.003
22. StatPearls. 2023.
23. Rodriguez-Gabella T, Voisine P, Puri R, Pibarot P, Rodés-Cabau J. Aortic Bioprosthetic Valve Durability: Incidence, Mechanisms, Predictors, and Management of Surgical and Transcatheter Valve Degeneration. J Am Coll Cardiol. Aug 22 2017;70(8):1013-1028. doi:10.1016/j.jacc.2017.07.715
24. Capodanno D, Petronio AS, Prendergast B, et al. Standardized definitions of structural deterioration and valve failure in assessing long-term durability of transcatheter and surgical aortic bioprosthetic valves: a consensus statement from the European Association of Percutaneous Cardiovascular Interventions (EAPCI) endorsed by the European Society of Cardiology (ESC) and the European Association for Cardio-Thoracic Surgery (EACTS). Eur J Cardiothorac Surg. Sep 01 2017;52(3):408-417. doi:10.1093/ejcts/ezx244
25. Dvir D, Bourguignon T, Otto CM, et al. Standardized Definition of Structural Valve Degeneration for Surgical and Transcatheter Bioprosthetic Aortic Valves. Circulation. Jan 23 2018;137(4):388-399. doi:10.1161/CIRCULATIONAHA.117.030729
26. Kostyunin AE, Yuzhalin AE, Rezvova MA, Ovcharenko EA, Glushkova TV, Kutikhin AG. Degeneration of Bioprosthetic Heart Valves: Update 2020. J Am Heart Assoc. Oct 20 2020;9(19):e018506. doi:10.1161/JAHA.120.018506
27. Baumgartner H, De Backer J, Babu-Narayan SV, et al. 2020 ESC Guidelines for the management of adult congenital heart disease. Eur Heart J. Feb 11 2021;42(6):563-645. doi:10.1093/eurheartj/ehaa554
28. Marek D, Gebauer AR, Mates M, Rubackova Popelova J, Antonova P, Zatocil T. (2020 ESC Guidelines for the management of adult congenital heart disease. Summary of the document prepared by the Czech Society of Cardiology). Cor et Vasa. / 2021;63(2):163-195.
29. Popelová J, Benesova M, Brtko M, et al. Doporučené postupy pro diagnostiku a léčbu chlopenních srdečních vad v dospělosti. Cor et vasa. 01/01 2007;49:6-45.
30. Starr A, Edwards ML. Mitral replacement: clinical experience with a ball-valve prosthesis. Ann Surg. Oct 1961;154(4):726-40. doi:10.1097/00000658-196110000-00017
31. Hlubocký J, Mokráček A, Nováček V, et al. Mechanical properties of mitral allografts are not reasonably influenced by cryopreservation in sheep model. Physiol Res. 2011;60(3):475-82. doi:10.33549/physiolres.932074
32. Doporučené postupy pro diagnostiku a léčbu chlopenních srdečních vad v dospělosti. journal article. Cor et Vasa. 2007;49(7):K195-234.
33. van Geldorp MW, Eric Jamieson WR, Kappetein AP, et al. Patient outcome after aortic valve replacement with a mechanical or biological prosthesis: weighing lifetime anticoagulant-related event risk against reoperation risk. J Thorac Cardiovasc Surg. Apr 2009;137(4):881-6, 886e1-5. doi:10.1016/j.jtcvs.2008.09.028
34. Dehaki MG, Al-Dairy A, Rezaei Y, Omrani G, Jalali AH, Javadikasgari H. Mid-term outcomes of mechanical pulmonary valve replacement: a single-institutional experience of 396 patients. Gen Thorac Cardiovasc Surg. Mar 2019;67(3):289-296. doi:10.1007/s11748-018-1012-0
35. Stulak JM, Dearani JA, Burkhart HM, et al. The increasing use of mechanical pulmonary valve replacement over a 40-year period. Ann Thorac Surg. Dec 2010;90(6):2009-14; discussion 2014-5. doi:10.1016/j.athoracsur.2010.07.023
36. Yang CC, Wei HJ, Hsieh SR, et al. Excellent mid-term durability of the On-X mechanical aortic valve in the pulmonary position with a low international normalized ratio. J Heart Valve Dis. May 2014;23(3):333-7.
37. Holmes AA, Co S, Human DG, Leblanc JG, Campbell AI. The Contegra conduit: Late outcomes in right ventricular outflow tract reconstruction. Ann Pediatr Cardiol. Jan 2012;5(1):27-33. doi:10.4103/0974-2069.93706
38. Rüffer A, Wittmann J, Potapov S, et al. Mid-term experience with the Hancock porcine-valved Dacron conduit for right ventricular outflow tract reconstruction. Eur J Cardiothorac Surg. Dec 2012;42(6):988-95. doi:10.1093/ejcts/ezs103
39. Burkhart HM, Phillips SD. Commentary: Pulmonary valve bioprosthesis: Longevity and reintervention. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 2021;161(2):364-365. doi:10.1016/j.jtcvs.2020.08.003
40. Kwak JG, Bang JH, Cho S, et al. Long-term durability of bioprosthetic valves in pulmonary position: Pericardial versus porcine valves. J Thorac Cardiovasc Surg. Aug 2020;160(2):476-484. doi:10.1016/j.jtcvs.2019.11.134
41. Tweddell JS, Pelech AN, Frommelt PC, et al. Factors affecting longevity of homograft valves used in right ventricular outflow tract reconstruction for congenital heart disease. Circulation. Nov 07 2000;102(19 Suppl 3):III130-5. doi:10.1161/01.cir.102.suppl_3.iii-130
42. Clarke DR, Campbell DN, Hayward AR, Bishop DA. Degeneration of aortic valve allografts in young recipients. J Thorac Cardiovasc Surg. May 1993;105(5):934-41; discussion 941-2.
43. da Costa FDA, Etnel JRG, Torres R, Balbi Filho EM, Calixto A, Mulinari LA. Decellularized Allografts for Right Ventricular Outflow Tract Reconstruction in Children. World J Pediatr Congenit Heart Surg. 09 2017;8(5):605-612. doi:10.1177/2150135117723916
44. Turrentine MW, McCarthy RP, Vijay P, McConnell KW, Brown JW. PTFE monocusp valve reconstruction of the right ventricular outflow tract. Ann Thorac Surg. Mar 2002;73(3):871-9; discussion 879-80. doi:10.1016/s0003-4975(01)03441-5
45. Quintessenza JA, Jacobs JP, Morell VO, Giroud JM, Boucek RJ. Initial experience with a bicuspid polytetrafluoroethylene pulmonary valve in 41 children and adults: a new option for right ventricular outflow tract reconstruction. Ann Thorac Surg. Mar 2005;79(3):924-31. doi:10.1016/j.athoracsur.2004.05.045
46. Carrel T. Past, present, and future options for right ventricular outflow tract reconstruction. Front Surg. 2023;10:1185324. doi:10.3389/fsurg.2023.1185324
47. Ando M, Takahashi Y. Trileaflet Polytetrafluoroethylene Valved Conduit for Pulmonary Reconstruction. Operative Techniques in Thoracic and Cardiovascular Surgery. 2011;16(3):168-178. doi:10.1053/j.optechstcvs.2011.02.002
48. Tocharoenchok T, Siriprompatr S, Subtaweesin T, Tantiwongkosri K, Nitiyarom E, Sriyoschati S. Early Outcome of Simplified Standardized Trileaflet Polytetrafluoroethylene Valved Conduit Placement. World J Pediatr Congenit Heart Surg. Nov 2022;13(6):723-730. doi:10.1177/21501351221117707
49. Hongu H, Yamagishi M, Maeda Y, et al. Expanded Polytetrafluoroethylene Conduits With Bulging Sinuses and a Fan-Shaped Valve in Right Ventricular Outflow Tract Reconstruction. Semin Thorac Cardiovasc Surg. 2022;34(3):972-980. doi:10.1053/j.semtcvs.2021.02.026
50. Mylonas KS, Tasoudis PT, Pavlopoulos D, Kanakis M, Stavridis GT, Avgerinos DV. Aortic valve neocuspidization using the Ozaki technique: A meta-analysis of reconstructed patient-level data. Am Heart J. Jan 2023;255:1-11. doi:10.1016/j.ahj.2022.09.003
51. Baird CW, Chávez M, Friedman KG. Pulmonary Valve Reconstruction Using the Ozaki Leaflet Reconstructive Techniques. Ann Thorac Surg. Jan 2021;111(1):e19-e21. doi:10.1016/j.athoracsur.2020.04.088
52. Giugno L, Faccini A, Carminati M. Percutaneous Pulmonary Valve Implantation. Korean Circ J. Apr 2020;50(4):302-316. doi:10.4070/kcj.2019.0291
53. Esmaeili A, Khalil M, Behnke-Hall K, et al. Percutaneous pulmonary valve implantation (PPVI) in non-obstructive right ventricular outflow tract: limitations and mid-term outcomes. Transl Pediatr. Apr 2019;8(2):107-113. doi:10.21037/tp.2019.04.02
54. Mates Martin KP, Kopřiva Karel. Katetrizační náhrada pulmonální chlopně u dospělých pacientů. 2018
55. Burkert J, Kochová P, Tonar Z, et al. The time has come to extend the expiration limit of cryopreserved allograft heart valves. Cell Tissue Bank. Jun 2021;22(2):161-184. doi:10.1007/s10561-020-09843-2
56. Therneau TM, Grambsch PM. Modeling Survival Data: Extending the Cox Model. 1st 2000. ed. Statistics for biology and health. Springer New York : Imprint: Springer; 2000.
57. Hochberg Y, Benjamini Y. More powerful procedures for multiple significance testing. Stat Med. Jul 1990;9(7):811-8. doi:10.1002/sim.4780090710
58. Kassambara A, Kosinski M, Biecek P, Fabian S. survminer: Drawing Survival Curves using ‘ggplot2’. R package version 03. 2017;1
59. Mosteller RD. Simplified calculation of body-surface area. N Engl J Med. Oct 22 1987;317(17):1098. doi:10.1056/NEJM198710223171717
60. Halushka MK, Angelini A, Bartoloni G, et al. Consensus statement on surgical pathology of the aorta from the Society for Cardiovascular Pathology and the Association For European Cardiovascular Pathology: II. Noninflammatory degenerative diseases - nomenclature and diagnostic criteria. Cardiovasc Pathol. 2016;25(3):247-257. doi:10.1016/j.carpath.2016.03.002
61. Cleveland DC, Williams WG, Razzouk AJ, et al. Failure of cryopreserved homograft valved conduits in the pulmonary circulation. Circulation. Nov 1992;86(5 Suppl):II150-3.
62. Albert JD, Bishop DA, Fullerton DA, Campbell DN, Clarke DR. Conduit reconstruction of the right ventricular outflow tract. Lessons learned in a twelve-year experience. J Thorac Cardiovasc Surg. Aug 1993;106(2):228-35; discussion 235-6.
63. Niwaya K, Knott-Craig CJ, Lane MM, Chandrasekaren K, Overholt ED, Elkins RC. Cryopreserved homograft valves in the pulmonary position: risk analysis for intermediate-term failure. J Thorac Cardiovasc Surg. Jan 1999;117(1):141-6; discussion 46-7. doi:10.1016/s0022-5223(99)70479-4
64. Stark J, Bull C, Stajevic M, Jothi M, Elliott M, de Leval M. Fate of subpulmonary homograft conduits: determinants of late homograft failure. J Thorac Cardiovasc Surg. Mar 1998;115(3):506-14; discussion 514-6. doi:10.1016/S0022-5223(98)70312-5
65. Bielefeld MR, Bishop DA, Campbell DN, Mitchell MB, Grover FL, Clarke DR. Reoperative homograft right ventricular outflow tract reconstruction. Ann Thorac Surg. Feb 2001;71(2):482-7; discussion 487-8. doi:10.1016/s0003-4975(00)02521-2
66. Vitanova K, Cleuziou J, Hörer J, et al. Which type of conduit to choose for right ventricular outflow tract reconstruction in patients below 1 year of age?†. Eur J Cardiothorac Surg. Dec 2014;46(6):961-6; discussion 966. doi:10.1093/ejcts/ezu080
67. Kalfa DM, Loundou A, Nouaille de Gorce Y, et al. Pulmonary position cryopreserved homograft in non-Ross patients: how to improve the results? Eur J Cardiothorac Surg. Dec 2012;42(6):981-7. doi:10.1093/ejcts/ezs248
68. Rodefeld MD, Ruzmetov M, Turrentine MW, Brown JW. Reoperative right ventricular outflow tract conduit reconstruction: risk analyses at follow up. J Heart Valve Dis. Jan 2008;17(1):119-26; discussion 126.
69. Baskett RJ, Ross DB, Nanton MA, Murphy DA. Factors in the early failure of cryopreserved homograft pulmonary valves in children: preserved immunogenicity? J Thorac Cardiovasc Surg. Nov 1996;112(5):1170-8; discussion 1178-9. doi:10.1016/S0022-5223(96)70130-7
70. Meyns B, Jashari R, Gewillig M, et al. Factors influencing the survival of cryopreserved homografts. The second homograft performs as well as the first. Eur J Cardiothorac Surg. Aug 2005;28(2):211-6; discussion 216. doi:10.1016/j.ejcts.2005.03.041
71. Lewis MJ, Malm T, Hallbergson A, et al. Long-Term Follow-Up of Right Ventricle to Pulmonary Artery Biologic Valved Conduits Used in Pediatric Congenital Heart Surgery. Pediatr Cardiol. Jan 2023;44(1):102-115. doi:10.1007/s00246-022-02956-3
72. Kalfa D, Macé L, Metras D, Kreitmann B. How to choose the best available homograft to reconstruct the right ventricular outflow tract. J Thorac Cardiovasc Surg. Oct 2011;142(4):950-3. doi:10.1016/j.jtcvs.2011.03.005
73. Koirala B, Merklinger SL, Van Arsdell GS, et al. Extending the usable size range of homografts in the pulmonary circulation: outcome of bicuspid homografts. Ann Thorac Surg. Mar 2002;73(3):866-9; discussion 869-70. doi:10.1016/s0003-4975(01)03559-7
74. Lisy M, Kalender G, Schenke-Layland K, Brockbank KG, Biermann A, Stock UA. Allograft Heart Valves: Current Aspects and Future Applications. Biopreserv Biobank. Apr 2017;15(2):148-157. doi:10.1089/bio.2016.0070
75. Fiala R, Kochová P, Kubíková T, et al. Mechanical and structural properties of human aortic and pulmonary allografts do not deteriorate in the first 10 years of cryopreservation and storage in nitrogen. Cell Tissue Bank. Jun 2019;20(2):221-241. doi:10.1007/s10561-019-09762-x
76. Kubíková T, Kochová P, Fiala R, et al. Histological Composition and Mechanical Properties of Cryopreserved Samples of Aortic and Pulmonary Valves. Solid State Phenomena. 12/01 2016;258:341-344. doi:10.4028/www.scientific.net/SSP.258.341
77. Schenke-Layland K, Madershahian N, Riemann I, et al. Impact of Cryopreservation on Extracellular Matrix Structures of Heart Valve Leaflets. The Annals of thoracic surgery. 04/01 2006;81:918-26. doi:10.1016/j.athoracsur.2005.09.016
78. Kano M, Masuda Y, Tominaga T, et al. Collagen synthesis and collagenase activity of cryopreserved heart valves. J Thorac Cardiovasc Surg. Oct 2001;122(4):706-11. doi:10.1067/mtc.2001.115421
79. Kitagawa T, Masuda Y, Tominaga T, Kano M. Cellular biology of cryopreserved allograft valves. J Med Invest. Aug 2001;48(3-4):123-32.
80. Burkert J, Krs O, Vojácek J, et al. Cryopreserved semilunar heart valve allografts: leaflet surface damage in scanning electron microscopy. Zentralbl Chir. Aug 2008;133(4):367-73. doi:10.1055/s-2008-1076872
81. Krs O, Slízová D, Burkert J, Spatenka J, Hottmar P. Impact of processing on surface structure of human cardiac valve allografts. Acta Medica (Hradec Kralove). 2004;47(2):97-9.
82. Heacox AE, McNally RT, Brockbank KGM. Factors affecting the viability of cryopreserved allograft heart valves. Steinkopff; 1988:37-42.
83. Koolbergen DR, Hazekamp MG, de Heer E, et al. The pathology of fresh and cryopreserved homograft heart valves: an analysis of forty explanted homograft valves. J Thorac Cardiovasc Surg. Oct 2002;124(4):689-97. doi:10.1067/mtc.2002.124514
84. Lupinetti FM, Christy JP, King DM, el Khatib H, Thompson SA. Immunogenicity, antigenicity, and endothelial viability of aortic valves preserved at 4 degrees C in a nutrient medium. J Card Surg. Dec 1991;6(4):454-61. doi:10.1111/j.1540-8191.1991.tb00345.x
85. Yankah AC, Wottge HU, Muller-Hermelink HK, et al. Transplantation of aortic and pulmonary allografts, enhanced viability of endothelial cells by cryopreservation, importance of histocompatibility. J Card Surg. Mar 1987;2(1 Suppl):209-20. doi:10.1111/jocs.1987.2.1s.209
86. Livi U, Abdulla AK, Parker R, Olsen EJ, Ross DN. Viability and morphology of aortic and pulmonary homografts. A comparative study. J Thorac Cardiovasc Surg. May 1987;93(5):755-60.
87. da Costa FD, Takkenberg JJ, Fornazari D, et al. Long-term results of the Ross operation: an 18-year single institutional experience. Eur J Cardiothorac Surg. Sep 2014;46(3):415-22; discussion 422. doi:10.1093/ejcts/ezu013

Předběžná náplň práce

Cílem práce bylo na základě retrospektivní analýzy dat pacientů, kteří podstoupili rekonstrukce RVOT, morfologického a histologického vyšetření explantovaných allograftů a allograftů před implantací, stanovit rizikové faktory selhání konduitů, navrhnout potenciální způsoby zlepšení dlouhodobých výsledků a zjistit, který typ náhrady by měl být preferován v případě primooperace a/nebo reintervence na RVOT. Retrospektivní část studie zahrnovala statistickou analýzu dat u celkem 766 implantací konduitu do RVOT u 590 pacientů a u 249 sekundárních a následných implantací u 197 pacientů. Endpointem studie bylo selhání konduitu, definované jako explantace konduitu; perkutánní balonková pulmonální valvuloplastika (včetně katetrizační náhrady pulmonální chlopně, plastiky kmene plicnice s výjimkou angioplastiky levé a/nebo pravé větví pilnice) a úmrtí pacienta. Dále jsme posoudili histopatologické známky strukturální degenerace, stupeň buněčné prezervace a přítomnost antigen-prezentujících buněk (APC) u 57 kryoprezervovaných allograftů následně použitých pro rekonstrukci RVOT a korelace těchto změn s klinickými charakteristikami dárce, dobou kryoprezervace a typy a průměry allograftů. Poté jsme hodnotili mikroskopickou strukturu explantovaných konduitů u 24 pacientů v souvislosti s dobou implantace, stupeň degenerativních změn a známky buněčné rejekce explantátů. Závěrem práce lze konstatovat, že rekonstrukce výtokového traktu pravé komory prokazuje dobré střednědobé a přijatelné dlouhodobé výsledky bez ohledu na typ implantovaného konduitu u primooperací a reintervencí. Dlouhodobé přežití konduitů ve výtokovém traktu pravé komory bylo nepříznivě ovlivněno menší velikostí použitých konduitů, mladším věkem příjemce, mladším věkem dárce, použitím aortálních allograftů, vstupní diagnózou a typem operace. U sekundárních a následujících intervencí negativním prediktorem přežití konduitu bylo také mužské pohlaví dárce. Mikroskopické strukturální změny lze detekovat téměř ve všech kryoprezervovaných allograftech. Změny ovlivňují jak cévní stěnu, tak cípy chlopně. Allografty před implantací prokázaly výrazně sníženou buněčnou prezervaci negativně korelující s počty APC. Mikroskopický vzhled dlouhodobých explantátů je často nespecifický a nálezy známek rejekce allogartů jsou vzácné.

Předběžná náplň práce v anglickém jazyce

Based on retrospective analysis combined with assessment of histopathological changes the study aimed to determine risk factors of conduit failure, evaluate long-term conduit survival, propose potential ways to improve long-term outcomes, and find out which type of conduit should be preferred in case of primary operation and /or reintervention. We performed a retrospective analysis of a total of 766 records of valved conduit implantation in the right ventricular outflow tract in 590 patients and 249 records of valved conduit secondary and subsequent replacement in 197 patients. The study endpoints were defined as conduit explants; balloon dilatation of the graft (excluding balloon dilatation of left/right pulmonary artery), transcatheter pulmonary valve implantation; heart transplantation, or death of the patient. We also assessed histopathological signs of structural degeneration, degree of cellular preservation, and presence of antigen-presenting cells (APC) in 57 cryopreserved allografts subsequently used for the RVOT reconstruction, and correlated the changes with donor clinical characteristics, cryopreservation times, and allograft types and diameters. Then we studied the microscopical structure of explanted conduits in 24 patients in correlation to the duration of implantation, assessed the degree of degenerative changes, and searched for signs of cellular rejection. As a result, right ventricular outflow tract reconstruction demonstrates good mid-term and acceptable long-term outcomes regardless of the type of conduit implanted. Long-term survival of conduits was adversely affected by the younger age of the recipient, the younger age of the donor, the small size of the conduit at implantation, the use of aortic allografts, underlying congenital heart disease, and the type of surgery. In reoperative RVOT, worse long-term graft survival was associated with the younger age of the recipient at implantation, the small size of the conduit, younger age of the donor and male donor in case of allograft implantation. Allografts before implantation show markedly reduced cellular preservation negatively correlating with the numbers of APC. More preserved allografts may be therefore prone to stronger immune rejection. The microscopic appearance of long-term explanted conduits is often non-specific and signs of cellular rejection are sparse.